только для медицинских специалистов

Консультант врача

Электронная медицинская библиотека

Раздел 6 / 9
Страница 3 / 4

5. Диагностика туберкулезного плеврита

Внимание! Часть функций, например, копирование текста к себе в конспект, озвучивание и т.д. могут быть доступны только в режиме постраничного просмотра.Режим постраничного просмотра
 

5.1 Обследование пациента с поражением плевры в учреждениях пМСп

При обращении пациента с жалобами и/или при выявлении рентгенологической картины, характерными для поражении плевры, пациент должен быть обследован в учреждениях ПМСП с применением следующих методов:

  • рентгенография органов грудной клетки (обзорные рентгенограммы в прямой и боковой(ых) проекциях). Изменения на прямой рентгенограмме, как правило, появляются при наличии в плевральной полости не менее 200 мл жидкости. Однако на латеральной рентгенограмме органов грудной клетки (рентгенограмма в положении на «больном» боку) можно выявить уже 50 мл жидкости по появлении тупого заднего косто-диафрагмального угла. Выполнение латерограммы оправдано только при невозможности проведения УзИ плевральной полости.
  • УЗИ плевральной полости;
  • УЗИ органов брюшной полости по показаниям;
  • СКТ органов грудной клетки и/или брюшной полости по показаниям. лабораторный диагностический минимум:

  1. клинический анализ крови, мочи, обследования на ВИЧ-инфекцию
  2. исследования мокроты на КУМ 3-кратно;
  3. при наличии изменений в легких – общий анализ мокроты, посев мокроты на флору, исследование мокроты на Ок.

  • плевральная пункция с исследованием плевральной жидкости является обязательной и выполняется в оптимальной точке, установленной при УЗи плевральной полости или при полипозиционной рентгеноскопии
  • во время плевральной пункции проводится максимальная эвакуация жидкости, но не более 1 500 мл за одну манипуляцию

  • жидкость, полученная при плевральной пункции, должна быть направлена на следующие виды исследований:
  • исследование физических свойств (количество, цвет, характер, прозрачность, цитоз и его формула, относительная плотность, проба Ривальта);
  • цитологическое исследование окрашенных препаратов с обязательной цитограммой и исследованием на ОК;
  • биохимическое исследование (определение белка, уровня глюкозы, рН, амилазы, ЛДГ);
  • микробиологическое исследование (микроскопия с окраской на КУМ);
  • бактериологическое исследование на неспецифическую микрофлору.
  • при обследовании пациента в учреждениях пМСп должны быть решены следующие задачи:
  • исключены или подтверждены острые состояния, требующие неотложной помощи: гемоторакс, эмпиема плевры, плеврит при ТЭлА, синдром дресслера, острая абдоминальная патология;
  • при сочетании плеврального выпота и инфильтрации в легком должен быть проведен курс адекватной антимикробной терапии вероятной пневмонии с последующей оценкой клинико-рентгенологической динамики;
  • необходимо доказать и документировать рентгенологическими методами наличие или отсутствие патологии в легком и/или средостении.

  • при подтверждении наличия в плевральной полости транссудата пациент не подлежит обследованию и лечению в условиях противотуберкулезного учреждения и должен быть направлен в стационар общелечебной сети для дальнейшего лечения и наблюдения

При выявлении экссудата необходимо проведение обследования, направленного на верификацию его генеза.

  • при изолированном плеврите его туберкулезная этиология должна быть подтверждена обнаружением возбудителя в плевральной жидкости (методом микроскопии, посева, МгМ) и/или туберкулезных гранулем в материале биоптата плевры
  • при наличии патологических изменений в легких и/или средостении туберкулезная этиология плеврита считается доказанной при верификации туберкулезной природы изменений в легочной ткани и/или средостении

Ситуации, когда показан перевод в учреждения фтизиатрической службы для уточнения диагноза:

  1. При обнаружении в мокроте, экссудате или другом материале кУМ, а также при выявлении других признаков, характерных для Тб легких или внеторакального Тб.
  2. При сочетании изолированного серозного экссудативного плеврита и синдрома воспалительной интоксикации.
  3. При выявлении серозного экссудативного плеврита у больных ВИЧ-инфекцией.
  4. При отсутствии положительной динамики после проведенной адекватной антимикробной терапии предполагаемой пневмонии, осложненной плевритом (в случае наличия инфильтрата в легком).
  5. При выявлении диссеминированного поражения легких при отсутствии аргументов в пользу септической пневмонии, диффузного заболевания соединительной ткани, метастатического поражения легких и других нетуберкулезных заболеваний.

5.2 Обследование пациента с поражением плевры в противотуберкулезном учреждении

С целью верификации генеза плеврита в противотуберкулезном учреждении проводится углубленное обследование пациента с применением неинвазивных и инвазивных методов диагностики.

  • Рентгенография органов грудной клетки в прямой и боковой(ых) проекциях для уточнения объема и локализации поражения плевры, а также для оценки состояния легочной ткани и средостения.
  • В случае обнаружения патологии в легких и/или средостении дальнейшая дифференциальная диагностика проводится исходя из выявленного рентгенологического синдрома в легких и/или средостении.
  • УЗИ плевральной полости для оценки распространенности, характера поражения плевры (свободная или осумкованная жидкость, локальное утолщение плевры) и установления оптимальной точки для проведения плевральной пункции и/или пункционной биопсии плевры.
  • УЗИ органов брюшной полости выполняется при дифференциальной диагностике Тб органов брюшной полости и забрюшинного пространства, первичной опухоли или метастатического поражения внутренних органов.
  • СКТ органов грудной клетки проводится с целью уточнения характера изменений легких и/или средостения (в том числе перед планируемыми инвазивными вмешательствами) после максимального удаления плеврального выпота.
  • Плевральная пункция является обязательной при обследовании пациента с экссудативным плевритом.
  • Оптимальная точка для плевральной пункции устанавливается при УЗИ или рентгеноскопии. При пункции необходимо эвакуировать максимальное количество жидкости, однако не более 1 500 мл за одну манипуляцию, с проведением ее комплексного лабораторного исследования (определение цитоза с формулой, удельного веса, биохимического состава, исследование аденозиндезаминазы, реакции Ривальта, исследования на микрофлору и обязательное исследование на кУМ/МбТ стандартными методами).
  • В случаях невозможности разграничения экссудата и транссудата необходимо воспользоваться дополнительными критериями лайта.
  • При выявлении эмпиемы или пиопневмоторакса лечебно-диагностические мероприятия должны проводиться в условиях отделения торакальной хирургии противотуберкулезного учреждения.
  • Важно помнить, что при ТБ количество и внешний вид экссудата, содержание в нем фибрина и клеточный состав в значительной степени зависят от характера морфологических изменений в плевре. клеточный состав плеврального выпота при Тб может меняться: в течение первой недели – нейтрофильный, на 2-3-й неделях заболевания – лимфоцитарный; позже – после повторных пункций и попадания крови в плевральную полость – он может стать эозинофильным.
  • Туберкулинодиагностика с использованием внутрикожной пробы Манту с 2 Те ppD-L, проба с аллергеном туберкулезным рекомбинантным в стандартном разведении (белок CFp10-ESAT6 0,2 мкг) или IGRA-тест. При оценке результатов кожных проб диагностическое значение будут иметь выраженная положительная и гиперергическая реакции.
  • Фибробронхоскопия с комплексом биопсий и/или исследованием бронхоальвеолярной лаважной жидкости проводится по показаниям, которые определяются изменениями в легких и/или средостении на рентгенограммах или СкТ органов грудной клетки.
  • Фибробронхоскопия не играет самостоятельной роли в дифференциальной диагностике при отсутствии патологических изменений в легких и/или средостении.

  • рентгенологическое исследование органов грудной клетки (классическая рентгенография или СКт) должно проводиться после максимального удаления плеврального выпота
при массивном плевральном выпоте (до II-IV ребра), смещении средостения и дыхательной недостаточности эвакуация жидкости должна производиться в день госпитализации

Методы этиологической диагностики туберкулеза для правильной постановки диагноза и назначения адекватных схем химиотерапии в лабораториях противотуберкулезных учреждений применяется следующая диагностическая схема:

  1. Выявление возбудителя (микроскопия, посев и ПцР как минимум из двух образцов мокроты и/или плеврального выпота до начала химиотерапии). достаточным основанием для этиологического подтверждения диагноза Тб может быть выявление микобактерий туберкулезного комплекса хотя бы в одном образце.
  2. классические микробиологические методы.
  3. Метод окраски по цилю – Нельсену (обязательно).
  4. люминесцентная микроскопия (в лабораториях при количестве исследований 30 и более в день).
  5. культивирование и идентификация M. tuberculosis с использованием как минимум двух разных по составу питательных сред (плотных – обязательно, жидких – настоятельно рекомендуется).
  6. МгМ (биочиповая, стриповая, картриджная технологии, ПцР в режиме реального времени).
  7. дифференциация МбТ от НТМб.
  8. По особенностям роста культуры (скорость роста, пигментообразование) и биохимическим тестам (обязательно).
  9. При культивировании на жидких питательных средах проводится тестирование на контаминацию (микроскопия культуры с окраской по цилю – Нельсену и посев на кровяной агар). Принадлежность к микобактериям туберкулезного комплекса подтверждается молекулярными методами.
  10. Молекулярные (иммунохроматографический тест, генетические методы ПцР IS6110, стриповая технология, протеомный массспектрометрический анализ).
  11. Определение лЧ возбудителя. В случае выявления устойчивости к изониазиду или рифампицину дважды МгМ, исследование лЧ к этим препаратам не должны дублироваться методом посева. Определение лекарственной устойчивости к препаратам резервного ряда проводятся после выявления лУ/МлУ при проведении ТлЧ к препаратам основного ряда. При двукратном подтверждении устойчивости возбудителя к ПТП любыми методами в дальнейшем исследование к этим препаратам может не проводиться.
  12. Фенотипические методы – культивирование МбТ в присутствии противотуберкулезных препаратов.
  13. На плотных средах методом абсолютных концентраций по числу выросших колоний.
  14. На плотных средах методом абсолютных концентраций с применением нитратредуктазного теста.
  15. На жидких средах – ВАСТеС MGIT 960 методом пропорций.
  16. МгМ – выявление специфических мутаций, связанных с резистентностью к определенным препаратам.
  17. Определение лЧ МбТ к препаратам основного ряда (биочиповая, стриповая, картриджная технологии, ПцР в режиме реального времени).
  18. Определение лЧ МбТ к препаратам второго ряда (биочиповая, стриповая технологии).
  19. биопсийные методы дифференциальной диагностики плевритов