4.7 Лабораторная диагностика.
4.7.1 Методы диагностики:
| Метод | Показания | Сила* |
| Бактериологический метод | Пациенты с клиническими симптомами коклюша, дети и взрослые, кашляющие более 7, но не более 21 дня; контактные дети и взрослые, работающие в детских учебных и лечебно-профилактических учреждениях. | А |
| Молекулярно- генетический метод (ПЦР) | Пациенты с клиническими симптомами коклюша, дети и взрослые, кашляющие более 7, но не более 28 дней; контактные дети и взрослые, работающие в детских учебных и лечебно- профилактических учреждениях. | А |
| Серологические методы (ИФА, РА) | Пациенты с клиническими симптомами коклюша, дети и взрослые, кашляющие более 14 дней для привитых детей и взрослых и более 21 дня для непривитых, контактные дети и взрослые, работающие в детских учебных и лечебно- профилактических учреждениях, вне зависимости от вакцинального статуса. | В |
| Экспресс-метод (РНИФ) | Пациенты с клиническими симптомами коклюша, дети и взрослые, кашляющие более 7 дней | D |
| Гематологический метод | Лейкоцитоз за счет лимфоцитоза при нормальной СОЭ | В |
Примечание: * - Оценка силы рекомендаций в соответствии с рейтинговой схемой.
Бактериологический метод — выделение B. pertussis из слизи задней стенки глотки или носоглотки на казеиново-угольный агар (КУА) или среду Борде-Жангу (картофельно- глицериновый агар с добавлением крови и пенициллина или цефалоспоринов 1 поколения с целью подавления кокковой микрофлоры - применяется редко). Забор материала осуществляют до начала антибактериальной терапии не ранее, чем через два часа после еды. Метод более информативен в ранние сроки заболевания (до 2-й недели периода спазматического кашля). Бактериологическое исследование с диагностической целью следует проводить двукратно ежедневно или через день в ранние сроки заболевания (не позднее 3-ей недели болезни). В более поздние сроки высеваемость бордетелл резко снижается.
Высокоспецифичным является молекулярно-генетический метод — полимеразная цепная реакция (ПЦР). Метод ПЦР позволяет в течение 4 – 6 часов обнаружить ДНК возбудителя на более поздних сроках заболевания, чем бактериологический метод, и на фоне проведения антибиотикотерапии. При этом наличие в анамнезе вакцинации против коклюша не влияет на результаты ПЦР. Однако в ПЦР обнаруживается ДНК не только живых, но и погибших микробов, которая сохраняются в биологическом материале от 1 недели до 1 месяца. В связи с этим ДНК может быть обнаружена на фоне клинического выздоровления и после успешного лечения антибиотиками, поэтому ПЦР не рекомендуется использовать для подтверждения эффективности лечения.
Серологический метод (РА) применяют для диагностики коклюша на поздних сроках или эпидемиологического анализа (обследование очагов). Диагностический титр при однократном обследовании непривитых пациентов — 1:80; наибольшее значение имеет четырехкратное нарастание титра специфических антител в парных сыворотках, взятым с интервалом 7-14 дней в зависимости от вакцинального статуса. Привитым детям исследование должно проводиться только в динамике с интервалом не менее 7 дней, независимо от первоначального титра специфических антител.
Методом иммуноферментного анализа определяют в крови антитела класса IgM (в ранние сроки) и IgG (в поздние сроки болезни). Метод отличается большей чувствительностью, по сравнению с РА и позволяет выявлять антитела к отдельным антигенам возбудителя (коклюшному токсину, филаментозному агглютинину), что важно для контроля эффективности иммунизации бесклеточными вакцинами.
С помощью экспресс-методов (РНИФ) выявляют антигены коклюшной палочки в браш-биоптате с задней стенки глотки.