только для медицинских специалистов

Консультант врача

Электронная медицинская библиотека

Раздел 2 / 4
Страница 8 / 19

2. ПОРАЖЕНИЕ ЛЕГКИХ ПОСЛЕ ОСТРОГО ПЕРИОДА SARS-COV-2

Внимание! Часть функций, например, копирование текста к себе в конспект, озвучивание и т.д. могут быть доступны только в режиме постраничного просмотра.Режим постраничного просмотра
 
 
 
 
 
 

Препараты выбора для эмпирической терапии всех вариантов COVID-ИК, кроме менингита и эндофтальмита, эхинокандины – анидулафунгин, каспофунгин и микафунгин. Триазолы (вориконазол, флуконазол) можно назначать только в случае выделения чувствительного к препарату возбудителя COVID-ИК при стабильном состоянии пациента, а также для лечения кандидозного менингита и эндофтальмита. Кроме того, вориконазол и флуконазол используют для де-эскалационной терапии после стабилизации больного на фоне применения эхинокандина. Липосомальный АмВ или липидный комплекс АмВ применяют в случае неэффективности, токсичности или недоступности эхинокандинов. Амфотерицин В, позаконазол и итраконазол не рекомендованы для лечения COVID-ИК.

Продолжительность лечения – не менее 14 суток после исчезновения клинических признаков COVID-ИК и отрицательного посева крови [62].

Таблица 1. Лабораторные и инструментальные методы диагностики инвазивного кандидоза [6]

Лабораторные исследования Инструментальные исследования
  • повторные посевы крови на специализированные среды (Сабуро, сусло-агар) 2 раза в день в течение не менее 3 дней
  • посев дистального фрагмента внутрисосудистого катетера
  • прямая микроскопия и посевы доступных биосубстратов с обязательным определением вида возбудителя, выявленного при посеве любого стерильного в норме биосубстрата
  • КТ или рентгенография органов грудной клетки
  • КТ или УЗИ брюшной полости
  • офтальмоскопия с расширением зрачка
  • биопсия очагов поражения, прямая микроскопия, посев, гистологическое исследование биопсийного материала с использованием специальных окрасок (PAS, по Грокотту)

Литература:

  1. Хостелиди С.Н., Шагдилеева Е.В., Шадривова О.В. с соавт. Случай генерализованного сочетанного микоза на фоне острой респираторной вирусной инфекции Проблемы медицинской микологии. 2019; 21 (4): 24-29. [Khostelidi S.N., Shagdileeva E.V., Shadrivova O.V. et al. The case of generalized combined mycosis on the background of acute respiratory viral infection. The Problems of Medical Mycology. 2019; 21 (4): 24-29].
  2. Schauwvlieghe A.F.A.D., Rijnders B.J.A., Philips N. et al. Invasive aspergillosis in patients admitted to the intensive care unit with severe influenza: a retrospective cohort study. Lancet Respir Med. 2018; 6(10): 782-792. doi: 10.1016/S2213-2600(18)30274-1.
  3. Хостелиди С.Н., Зайцев В.А., Пелих Е.В. с соавт. Мукормикоз на фоне COVID-19: описание клинического случая и обзор литературы. КМАХ. 2021; 23(3): 256-262.
  4. Zhu X., Ge Y., Wu T. et al. Co-infection with respiratory pathogens among COVID-2019 cases. Virus Res. 2020; 285: 198005. doi: 10.1016/j. virusres.2020.198005.
  5. Talento A.F., Hoenig M. Fungal Infections Complicating COVID-19: With the Rain Comes the Spores. J Fungi (Basel). 2020; 6(4): 279-280. doi: 10.3390/jof6040279.
  6. Васильева Н.В., Климко Н.Н., Цинзерлинг В.А. Диагностика и лечение инвазивных микозом: современные рекомендации. Вестник Санкт Петербургской медицинской академии последипломного образования. 2010; 2(4): 5-18. [Vassilieva N.V., Klimko N.N., Zinserlin V.A. Modern recommendations for diagnosis and treatment of invasive mycosis. Bulletin of St. Petersburg Medical Academy of Postgraduate Education. 2010; 2(4): 5-18].
  7. Arastehfar, A., Carvalho, A., Nguyen, M.H. et al. COVID-19-Associated Candidiasis (CAC): An Underestimated Complication in the Absence of Immunological Predispositions? J. Fungi. 2020; 6(4): 211. https://doi.org/10.3390/JOF6040211.
  8. Arastehfar A., Carvalho A., Hong Nguyen M. et al. Covid-19-associated candidiasis (Cac): An underestimated complication in the absence of immunological predispositions? Journal of Fungi. 2020; 6: 1-13. doi: 10.3390/jof6040211.
  9. Chiurlo M., Mastrangelo A., Ripa M., Scarpellini P. Invasive fungal infections in patients with COVID-19: a review on pathogenesis, epidemiology, clinical features, treatment, and outcomes. New Microbiologica. 2021; 44(2): 71-83. 
  10. Cuntrò M., Manisco A., Guarneri D. et al. Blood stream infections during the first wave of COVID-19. A short microbiological retrospective picture at Papa Giovanni XXIII Hospital, Bergamo, Italy. New Microbiol. 2021; 44(1): 51-58.
  11. Falcone M., Tiseo G., Giordano C. et al. Predictors of hospital-acquired bacterial and fungal superinfections in COVID-19: a prospective observational study. Journal of Antimicrobial Chemother. 2021; 76(4):1078-1084. doi: 10.1093/jac/dkaa530.
  12. Grasselli G., Scaravilli V., Mangioni D. et al. Hospital-acquired infections in critically-ill COVID-19 patients. Chest. 2021; 160(2): 454-465. doi: 10.1016/j.chest.2021.04.002.
  13. Nucci M., Barreiros G., Guimarães L.F. et al. Increased incidence of candidemia in a tertiary care hospital with the COVID-19 pandemic. Mycoses. 2021; 64: 152-156. doi: 10.1111/myc.13225.
  14. Chowdhary A., Tarai B., Singh A., Sharma A. MultidrugResistant Candida auris Infections in Critically Ill Coronavirus Disease Patients, India, April-July 2020. Emerg. Infect. Dis. 2020; 26(11): 2694-2696. https://doi.org/10.3201/EID2611.203504
  15. Jerez Puebla L.E. Fungal Infections in Immunosuppressed Patients. Immunodeficiency. 2012. https://doi.org/10.5772/51512.
  16. Bommanavar S.B., Gugwad S., Malik N. Phenotypic switch: The enigmatic white-grayopaque transition system of Candida albicans. J. Oral Maxillofac. Pathol. 2017; JOMFP 21 (1): 82-86. https://doi.org/10.4103/0973-029X.203781.
  17. Chakrabarti A., Sood P. On the emergence, spread and resistance of Candida auris: host, pathogen and environmental tipping points. J. Med. Microbiol. 2021; 70(3). https://doi.org/10.1099/JMM.0.001318.
  18. Garcia M.C., Lee J.T., Ramsook C.B. et al. A role for amyloid in cell aggregation and biofilm formation. PLoS One. 2011; 6:e17632. doi: 10.1371/journal.pone.0017632.
  19. Odds F.C. Secreted proteinases and Candida albicans virulence. Microbiology. 2008; 154(11): 3245-3246. doi:10.1099/mic.0.2008/023671-0.
  20. Sudbery P.E. Growth of Candida albicans hyphae. Nat Rev Microbiol. 2011; 9: 737-748. doi: 10.1038/nrmicro2636
  21. Pathakumari B., Liang G., Liu W. Immune defence to invasive fungal infections: A comprehensive review. Biomed Pharmacother. 2020; 130: 110550. doi: 10.1016/j.biopha.2020.110550.
  22. Kasper L., Franke A., Mogavero S. et al. Role of the fungal peptide toxin Candidalysin in macrophage damage and inflammatory response. Mycoses. 2016; 59: 15.
  23. Mastrangelo A., Germinario B.N., Ferrante M. et al. COVID-BioB Study Group. Candidemia in COVID-19 patients: incidence and characteristics in a prospective cohort compared to historical non-COVID-19 controls. Clin Infect Dis. 2021; 73(9): 2838-2839. doi: 10.1093/cid/ciaa1594.
  24. Arunachalam P.S., Wimmers F., Mok C.K.P. et al. Systems biological assessment of immunity to mild versus severe COVID-19 infection in humans. Science. 2020; 369: 1210-122. doi: 10.1126/science.abc6261.
  25. Lamers M.M., Beumer J., Vaart J. et al. SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science. 2020; 369: 50-54. doi: 10.1126/science.abc1669.
  26. Zuo T., Zhan H., Zhang F. et al. Alterations in Fecal Fungal Microbiome of Patients With COVID-19 During Time of Hospitalization until Discharge. Gastroenterology. 2020; 159: 1302-1310. doi: 10.1053/j.gastro.2020.06.048.
  27. Abelenda-Alonso G., Padullés A., Rombauts A. et al. Antibiotic prescription during the COVID-19 pandemic: A biphasic pattern. Infection Control and Hospital Epidemiology. Infect Control Hosp Epidemiol. 2020; 1–2. doi: 10.1017/ice.2020.381.
  28. Grasselli G., Scaravilli V., Mangioni D. et al. Hospital-acquired infections in critically-ill COVID-19 patients. Chest. 2021; 160(2): 454-465. doi: 10.1016/j.chest.2021.04.002.
  29. Guisado-Gil A.B., Infante-Domínguez C., Peñalva G. et al. Impact of the COVID-19 Pandemic on Antimicrobial Consumption and Hospital-Acquired Candidemia and Multidrug-Resistant Bloodstream Infections. Antibiotics (Basel). 2020; 9(11): 816. doi: 10.3390/antibiotics9110816.
  30. Langford B.J., So M., Raybardhan S., Leung V. et al. Bacterial co-infection and secondary infection in patients with COVID-19: a living rapid review and meta-analysis. Clin Microbiol Infect. 2020; 26: 1622-1629. doi: 10.1016/j.cmi.2020.07.016.
  31. Rawson T.M., Moore L.S.P., Zhu N. et al. Bacterial and Fungal Coinfection in Individuals with Coronavirus: A Rapid Review to Support COVID-19 Clin Infect Dis. 2020; 71(9): 2459-2468. doi: 10.1093/cid/ciaa530.
  32. Richardson S., Hirsch J.S., Narasimhan M. et al. Presenting Characteristics, Comorbidities, and Outcomes Among 5700 Patients Hospitalized With COVID-19 in the New York City Area. JAMA. 2020; 323(20): 2052-2059. doi: 10.1001/jama.2020.6775.
  33. Ripa M., Galli L., Poli A. et al. Secondary infections in patients hospitalized with COVID-19: incidence and predictive factors. Clinical Microbiology and Infection. 2021; 27: 451- 457. doi: 10.1016/j.cmi.2020.10.021.
  34. Yapar N. Epidemiology and risk factors for invasive candidiasis. Ther Clin Risk Manag. 2014: 10; 95-105. doi: 10.2147/TCRM.S40160.
  35. Vaughn V.M., Gandhi T.N., Petty L.A. et al. Empiric Antibacterial Therapy and Community-onset Bacterial Coinfection in Patients Hospitalized With Coronavirus Disease 2019 (COVID-19): A Multi-hospital Cohort Study. Clin Infect Dis. 2021; 72(10): e533-e541. doi: 10.1093/cid/ciaa1239.
  36. Antinori S., Bonazzetti C., Gubertini G. et al. Tocilizumab for cytokine storm syndrome in COVID-19 pneumonia: an increased risk for candidemia? Autoimmun Rev. 2020; 19. doi: 10.1016/j.autrev.2020.102564.
  37. Kimmig L.M., Wu D., Gold M. et al. IL-6 Inhibition in Critically Ill COVID-19 Patients Is Associated With Increased Secondary Infections. Front Med (Lausanne). 2020; 7. doi: 10.3389/fmed.2020.583897.
  38. Riche C.V.W., Cassol R., Pasqualotto A.C. Is the Frequency of Candidemia Increasing in COVID-19 Patients Receiving Corticosteroids? Journal of Fungi. 2020. 6, 286. https://doi.org/10.3390/ jof6040286.
  39. Tang Y., Liu J., Zhang D. et al. Cytokine Storm in COVID-19: The Current Evidence and Treatment Strategies. Front. Immunol. 2020; 1708. https://doi.org/10.3389/FIMMU.2020.01708.
  40. Heidenreich S., Kubis T., Schmidt M., Fegeler W. Glucocorticoid-induced alterations of monocyte defense mechanisms against Candida albicans. Cell. Immunol. 1994; 157(2): 320-327. https://doi.org/10.1006/CIMM.1994.1230.
  41. Riad A., Gomaa E., Hockova B., Klugar M.. Oral candidiasis of COVID-19 patients: Case report and review of evidence. J. Cosmet. Dermatol. 2021; 20(6): 1580-1584. https://doi.org/10.1111/ JOCD.14066. 
  42. Corchuelo J., Ulloa F.C. Oral manifestations in a patient with a history of asymptomatic COVID-19: Case report. Int. J. Infect. Dis. : Off. Publ. Int. Soc. Infect. Dis. 2020; 100: 154- 157. https://doi.org/10.1016/J.IJID.2020.08.071.
  43. Jeronimo L.S., Esteves Lima R.P., Suzuki T. et al. Oral Candidiasis and COVID-19 in Users of Removable Dentures: Is Special Oral Care Needed? Gerontology. 2022; 68(1): 80-85. doi: 10.1159/000515214.
  44. Nieto M., Robles J.C., Causse M. et al. Polymerase Chain Reaction Versus Blood Culture to Detect Candida Species in High-Risk Patients with Suspected Invasive Candidiasis: The MICAFEM Study. Infect. Dis. Ther. 2019; 8(3): 429-444. https://doi.org/10.1007/S40121- 019-0248-Z.
  45. Arastehfar A., Carvalho A., Nguyen M.H. et al. COVID-19-Associated Candidiasis (CAC): An Underestimated Complication in the Absence of Immunological Predispositions? J. Fungi. 2020; 6(4): 211. https://doi.org/10.3390/JOF6040211.
  46. Song G., Liang G., Liu W. Fungal Co-infections Associated with Global COVID-19 Pandemic: A Clinical and Diagnostic Perspective from China. Mycopathologia. 2020; 185(4): 599-606. https://doi.org/10.1007/S11046-020-00462-9.
  47. Рябинин И.А., Сальникова В.А., Васильева Н.В. Аннотация MALDI-масс-спектров клеточной биомассы штаммов Candida albicans berkhout. Проблемы медицинской микологии. 2022; 24(1): 41-52. doi:10.24412/1999-6780-2022-1-41-52 [Ryabinin I.A., Salnikova V.A., Vasilyeva N.V. Annotation of MASS-spectra of cellular biomass from Candida albicans Berkhout strains. Problems of Medical Mycology. 2022; 24(1): 41-52. doi:10.24412/1999-6780-2022-1-41-52
  48. Clancy C.J., Nguyen M.H. Diagnosing invasive candidiasis. J. Clin. Microbiol. 2018; 56(5): 01909-01917. https://doi.org/10.1128/JCM.01909-17.
  49. Иванова Л.В. , Баранцевич Е.П., Шляхто Е.В. Резистентность грибов-патогенов к антимикотикам (обзор). Проблемы медицинской микологии. 2011; 13(1): 14-17. [Ivanova L.V., Barantsevich E.P., Shlyakchto E.V. Resistance of fungi-pathogens to antifungal preparations (revirew). Problems of Medical Mycology. 2011; 13(1): 14-17].
  50. de Oliveira Santos G.C., Vasconcelos C.C., Lopes A.J.O. et al. Candida Infections and Therapeutic Strategies: Mechanisms of Action for Traditional and Alternative Agents. Front. Microbiol. 2018; 1351. https://doi.org/10.3389/FMICB.2018.01351.
  51. Mazur P., Baginsky W. In vitro activity of 1,3-β-D-glucan synthase requires the GTPbinding protein rho1. J Biol Chem. 1996; 271: 14604-14609. doi: 10.1074/jbc.271.24.14604.
  52. Park S., Kelly R., Kahn J.N. et al. Specific substitutions in the echinocandin target fks1p account for reduced susceptibility of rare laboratory and clinical Candida sp. isolates. Antimicrob Agents Chemother. 2005; 49: 3264-3273. doi: 10.1128/AAC.49.8.3264- 3273.2005.
  53. Garcia-Effron G., Park S., Perlin D.S. Correlating echinocandin MIC and kinetic inhibition of FKS1 mutant glucan synthases for Candida albicans: Implications for interpretive breakpoints. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53: 112-122. doi: 10.1128/AAC.01162-08.
  54. Shields R.K., Nguyen M.H., Press E.G. et al. The presence of an FKS mutation rather than MIC is an independent risk factor for failure of echinocandin therapy among patients with invasive candidiasis due to Candida glabrata. Antimicrob Agents Chemother. 2012; 56: 4862-4869. doi: 10.1128/AAC.00027-12. 
  55. Alexander B.D., Johnson M.D., Pfeiffer C.D. et al. Increasing echinocandin resistance in Candida glabrata: clinical failure correlates with presence of FKS mutations and elevated minimum inhibitory concentrations. Clin Infect Dis. 2013; 56: 1724-1732. doi: 10. 1093/cid/cit136.
  56. Shields R., Nguyen M., Press E. et al. Caspofungin MICs correlate with treatment outcomes among patients with Candida glabrata invasive candidiasis and prior echinocandin exposure. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57(8): 3528- 3535. doi: 10.1128/AAC.00136-13.
  57. Hou X., Healey K.R., Shor E. et al. Novel FKS1 and FKS2 modifications in a high-level echinocandin resistant clinical isolate of Candida glabrata. Emerg Microbes Infect. 2019; 8(1): 1619-1625. doi: 10.1080/22221751.2019.1684209.
  58. Lewis J.S., 2nd, Wiederhold N.P., Wickes B.L. et al. Rapid emergence of echinocandin resistance in Candida glabrata resulting in clinical and microbiologic failure. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57: 4559-4561. doi: 10.1128/AAC.01144-13.
  59. Bhatt K., Agolli A., Patel M.H. et al. High mortality co-infections of COVID-19 patients: mucormycosis and other fungal infections. Discoveries. 2021; 9(1): e126. https://doi.org/10.15190/D.2021.5.
  60. Chaabane F., Graf A., Jequier L., Coste A.T. Review on Antifungal Resistance Mechanisms in the Emerging Pathogen Candida auris. Front. Microbiol. 2019; 10: 2788. https://doi.org/10.3389/FMICB.2019.02788.
  61. Sanguinetti M., Posteraro B., Lass-Florl C. Antifungal drug resistance among Candida species: mechanisms and clinical impact. Mycoses. 2015; 58(Suppl 2): 2-13. https://doi.org/10.1111/MYC.12330.
  62. Временные методические рекомендации «Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции COVID-19» Министерства здравоохранения Российской Федерации. Версия 15. 22.02.2022 г. 

2.4.2. Мукормикоз, ассоциированный с COVID-19 (Н.А.Карчевская)

Основными предрасполагающими факторами является сахарный диабет и применение кортикостероидов. Имеют так же значение наличие спор Mucorales как в помещении, так и на открытом воздухе, а также иммунотерапия, проводимая у пациентов в острой фазе заболевания.

Распространенные виды, вызывающие мукормикоз включают Rhizopus spp., Rhizomucor spp., Mucor spp., Lichtheimia spp., Apophysomyces spp., Cunninghamella spp. и Saksenaea spp. [1-5]

Спорангиоспоры Mucorales различаются по размеру в зависимости от вида (диапазон 3–11 мкм).

Основным путем заражения мукормикозом является ингаляционный. Относительно более крупные споры R. arrhizus попадают в эпителий носа и пазухи и, таким образом, могут привести к риноорбитоцеребральному мукормикозу, тогда как относительно более мелкие споры Cunninghamella spp. могут достигать нижних дыхательных путей, что приводит к легочному мукормикозу. [6] Однако имеющиеся данные свидетельствуют о том, что любые патогенные виды Mucorales могут вызывать любые клинические проявления. [7]

Перегрузка железом и терапия дефероксамином являются хорошо известными факторами риска развития мукормикоза. [8] Свободное железо, захваченное сидерофорами видов Rhizopus, способствует их росту.

Мукормикоз может возникнуть как на этапе острой фазы заболевания, так и после выздоровления. [9-10]

Мукормикоз следует заподозрить у любого пациента перенесшего COVID-19, имеющего неконтролируемый сахарный диабет, получавшего глюкокортикостероиды и у которого развились следующие симптомы:

Риноорбитоцеребральный мукормикоз: симптомы не специфичны, особенно на первоначальном этапе и включают локальную боль в области придаточных пазух носа, глазных яблоках или лицевой части черепа, снижение остроты зрения, отек мягких тканей, птоз, нарушение кожной чувствительности, носовые кровотечения, язвы и корки в носу, некроз твердого неба. При вовлечении в процесс ЦНС могут появляться признаки отека головного мозга, а при инвазии в сосуды возникает тромбоз кавернозного синуса, облитерация и тромбоз внутренней сонной артерии, инфаркт головного мозга.

Легочный мукормикоз: поражение легких при мукормикозе сложно диагностировать, поскольку симптомы достаточно неспецифичны. [11] Может присутствовать лихорадка, кашель, кровохарканье, боль в грудной клетке и плевральный выпот. Для мукормикоза особенно характерны некроз паренхимы легкого и легочные кровотечения. [12] К более редким формам мукормикоза можно отнести кожный, гастроинтестинальный и диссеминированный.

Диагностика мукормикоза:

Методы визуализации: при подозрении на риноцеребральный мукормикоз необходимо выполнение КТ или МРТ головного мозга и придаточных пазух носа. МРТ имеет преимущество перед КТ, так как позволяет определить степень грибковой инвазии, тогда как КТ лучше выявляет костную деструкцию, которая отмечается на поздних стадиях инфекции. При мукормикозе легких по данным КТ органов грудной клетки можно видеть: локальные инфильтративные и очаговые изменения, симптом «halo sign», обратный «halo sign», плеврит. [13-14]

Лабораторные методы: окраска калькофлуором белым (характерный широкий (10-50 мкм) несептированный или редкосептированный мицелий, ветвящийся под прямым углом), посев, гистологическое исследование биопсийного или постоперационного материала (окраска ПАС, Гомори-Гроккоту). Малодоступным методом является определение ПЦР с последующим секвенированием и матрично-вспомогательной лазерной десорбцией/ионизацией по времени пролета (MALDI-TOF). В связи с низкой диагностической чувствительностью микроскопии и посева нередко необходимо повторное исследование.

Лечение включает в себя антимикотическую терапию, хирургическое вмешательство (при наличии некроза ткани) и устранение факторов риска (коррекция нейтропении, диабета, кетоацидоза, отмена или снижение дозы ГКС, иммуносупрессантов и др).

Антимикотическая терапия: препаратами выбора являются препараты группы полиенов: липосомальный амфотерицин В или липидный комплекс амфотерицин В в дозе 5 мг/кг в день в 200 мл 5 % декстрозы в течение 2-3 часов в течение 3-6 недель.

При недоступности препаратов выбора, возможно применение Амфотерицина В деоксихолат 1-1,5 мг/кг/сут в течение 3-6 недель

При недоступности полиенов применяются изавуконазол 200 мг 3 раза в день в/в в течение 300 мг 2 раза в день в первый день потом по 300 мг в день в течение 3-6 недель

При недоступности вышеперечисленных препаратов возможно использование итраконазола 200 мг 3 раза в день в течение 3-6 недель в инъекционной форме или форме суспензии.

При стабилизации состояния возможет переход на пероральные формы: изавуконазол 200 мг 3 раза в день в течение 1-2 дней, потом по 200 мг в день в течение 3-6 месяцев.

Или позаконазол 300 мг 2 раза в день в первый день, потом по 300 мг в день в течение 3-6 месяцев.

Литература:

  1. Patel A, Agarwal R, Rudramurthy SM, et al. Multicenter epidemiologic study of coronavirus disease-associated mucormycosis. India. Emerg Infect Dis. 2021; 27(9). https://doi.org/10.3201/eid2709.210934.
  2. Prakash H, Chakrabarti A. Global epidemiology of mucormycosis. J Fungi. 2019; 5(1): 26. https://doi.org/10.3390/jof5010026
  3. Prakash H, Chakrabarti A. Epidemiology of mucormycosis in India. Microorganisms. 2021; 9(3): 1- 12.
  4. Lanternier F, Dannaoui E, Morizot G, et al. A global analysis of mucormycosis in France: the RetroZygo study (2005–2007). Clin Infect Dis. 2012; 54(Suppl 1): S35- S43. 
  5. Guinea J, Escribano P, Vena A, et al. Increasing incidence of mucormycosis in a large Spanish hospital from 2007 to 2015: Epidemiology and microbiological characterization of the isolates. PLoS One. 2017; 12(6): 1- 10. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0229347
  6. Prakash H, Chakrabarti A. Global epidemiology of mucormycosis. J Fungi. 2019; 5(1): 26.
  7. Rammaert B, Lanternier F, Zahar JR, et al. Healthcare-associated mucormycosis. Clin Infect Dis. 2012; 54(Suppl 1): S44- S54.
  8. Ibrahim AS, Spellberg B, Walsh TJ, Kontoyiannis DP. Pathogenesis of mucormycosis. Clin Infect Dis. 2012; 54(Suppl 1): S16- S22.
  9. Risk Factors for Procurence of Mucormycosis and its Manifestations Post Covid-19: a Single Arm Retrospective Unicentric Clinical Study. Gupta S, Ahuja P. Indian J Otolaryngol Head Neck Surg. 2021 Sep 18:1-8. doi: 10.1007/s12070-021-02825-0. Online ahead of print. PMID: 34567997
  10. Hoenigl M, Seidel D, Carvalho A, et al. The emergence of COVID-19 associated mucormycosis: analysis of cases from 18 countries. Bioxriv. 2021.
  11. Garg D, Muthu V, Sehgal IS, et al. Coronavirus Disease (Covid-19) Associated Mucormycosis (CAM): case report and systematic review of literature. Mycopathologia. 2021; 186(2): 289- 298. https://doi.org/10.1007/s11046-021-00528-2
  12. Patel A, Agarwal R, Rudramurthy SM, et al. Multicenter epidemiologic study of coronavirus disease-associated mucormycosis. India. Emerg Infect Dis. 2021; 27(9). https://doi.org/10.3201/eid2709.210934.
  13. Hoenigl M, Seidel D, Carvalho A, et al. The emergence of COVID-19 associated mucormycosis: analysis of cases from 18 countries. Bioxriv. 2021. https://doi.org/10.2139/ssrn.3844587
  14. Cornely OA, Alastruey-Izquierdo A, Arenz D, et al. Global guideline for the diagnosis and management of mucormycosis: an initiative of the European Confederation of Medical Mycology in cooperation with the Mycoses Study Group Education and Research Consortium. Lancet Infect Dis. 2019; 19(12): e405- e421.
  15. ECMM/ISHAM recommendations for clinical management of COVID-19 associated mucormycosis in low- and middle-income countries. Rudramurthy SM, Hoenigl M, Meis JF, Cornely OA, Muthu V, Gangneux JP, Perfect J, Chakrabarti A; ECMM and ISHAM. Mycoses. 2021 Sep;64(9):1028-1037. doi: 10.1111/myc.13335. Epub 2021 Jul 26. PMID: 34133816