только для медицинских специалистов

Консультант врача

Электронная медицинская библиотека

Раздел 6 / 13
Страница 27 / 88

5. ИММУНИЗАЦИЯ ВЗРОСЛЫХ ПРИ ОТДЕЛЬНЫХ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ

Внимание! Часть функций, например, копирование текста к себе в конспект, озвучивание и т.д. могут быть доступны только в режиме постраничного просмотра.Режим постраничного просмотра
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Совместимость различных видов вакцин

Все вакцины от кори сочетаются с любыми другими вакцинами, за исключением БЦЖ, которую необходимо вводить отдельно, в связи с вероятностью снижения ее эффективности на фоне иммунизации от кори.

Техника иммунизации

Все вакцины вводятся подкожно в объеме 0,5 мл под лопатку или в наружную область плеча. После введения необходимо не допускать контакта области введения с эфиром, спиртом и детергентами, по причине инактивации вакцины этими веществами, до момента высыхания.

Лица, привитые ранее однократно, подлежат проведению однократной иммунизации с интервалом не менее 3-х месяцев между прививками.

Противопоказания

Противопоказаниями для вакцинации от кори являются:

  • сильная реакция и осложнения на предыдущую дозу вакцины;
  • развитие анафилактической реакции на живую паротитную вакцину (ЖПВ) является противопоказанием для применения ЖКВ (используется общий субстрат культивирования);
  • первичные иммунодефицитные состояния, комбинированного и Т-клеточного типов
  • тяжелые формы аллергических реакций на аминогликозиды, яичный белок;
  • беременность;
  • острые заболевания и обострения хронических заболеваний.

К сильной общей реакции относят температуру выше 40 °С, к сильной местной реакции — отек и гиперемию в месте введения вакцины более 8 см в диаметре.

ВИЧ-инфекция не является противопоказанием для вакцинации, вакцинация проводится после консультации с инфекционистом.

У лиц с вторичными иммунодефицитными состояниями, включая ВИЧ-инфицированных, после пересадки крупных органов, трансплантации гемопоэтических стволовых клеток, вакцинация живыми вакцинами рекомендуется только при адекватности клеточного иммунитета (количество CD4+ Т-лимфоцитов более 200 кл/мкл), а также, в случае предшествующей профилактики, с использованием иммуноглобулина человека нормального, вакцинация от кори рекомендуется не ранее чем через 6 месяцев от даты введения иммуноглобулина [15–19].

Сроки и порядок наблюдения после иммунизации

Учитывая возможность развития аллергических реакций немедленного типа (анафилактический шок, отек Квинке, крапивница) у особо чувствительных лиц, за привитыми необходимо обеспечить медицинское наблюдение в течение 30 мин.

Поствакцинальные реакции и осложнения

Реакция на живую коревую культуральную вакцину развивается менее чем у 15% вакцинируемых в период с 5–6 дней до 15 суток. Может отмечаться повышение температуры тела, катаральные явления. Возможно появление мелкой кореподобной сыпи.

Аллергические реакции крайне редки, частота не превышает 1 случая на 30 000 вакцинаций. Анафилактический шок развивается с частотой менее 1 случая на 1 млн вакцинаций. Вакцины, изготавливаемые на клетках куриных эмбрионов, практически лишены овальбумина, и несут лишь минимальный риск развития ГНТ.

Энцефалит после вакцинации развивается чрезвычайно редко (1:1 000 000), в основном у лиц с иммунодефицитным состоянием. При ВИЧ-инфекции энцефалит может развиваться в течение полугода после вакцинации при сохраняющемся явлении иммунодефицита.

Случаи развития подострого склерозирующего панэнцефалита на введение коревой вакцины не зарегистрированы.

Эффективность иммунизации

Живая коревая культуральная вакцина из штамма Л-16 обеспечивает 95% сероконверсию через 1 месяц после иммунизации; защитные титры антител сохраняются в течение нескольких лет. Только у очень небольшого числа вакцинированных иммунитет может угасать. Ревакцинация обеспечивает дополнительную защиту с сохранением защитных титров антител в течение 8–10 лет, что соответствует всем мировым аналогам.

Список литературы к разделу

  1. Bellini W.J., Rota J.S., Lowe L.E., et al. Subacute sclerosing panencephalitis: More cases of this fatal disease are prevented by measles immunization than was previously recognized. J Infect Dis. 2005;192:1686–1693. doi: 10.1086/497169.
  2. Bitnun A., Shannon P., Durward A., et al. Measles inclusion-body encephalitis caused by the vaccine strain of measles virus. Clin Infect Dis. 1999;29:855– 861. doi: 10.1086/520449.
  3. Hardie D.R., Albertyn C., Heckmann J.M., Smuts H.E.M. Molecular characterisation of virus in the brains of patients with measles inclusion body encephalitis (MIBE) Virol J 2013;10. doi: 10.1186/1743-422X10-283.
  4. Ivancic-Jelecki J., Baricevic M., Santak M., et al. The first genetic characterization of a D4 measles virus strain derived from a patient with subacute sclerosing panencephalitis. Infect Genet Evol. 2013;17:71–78. doi: 10.1016/j.meegid.2013.03.032.
  5. Jiang D.-P., Ide Y.-H., Nagano-Fujii M., et al. Single-point mutations of the M protein of a measles virus variant obtained from a patient with subacute sclerosing panencephalitis critically affect solubility and subcellular localization of the M protein and cell-free virus production. Microbes Infect. 2009;11:467–475. doi: 10.1016/j.micinf.2009.01.009.
  6. Hotta H., Nihei K., Abe Y., et al. Full-length sequence analysis of subacute sclerosing panencephalitis (SSPE) virus, a mutant of measles virus, isolated from brain tissues of a patient shortly after onset of SSPE. Microbiol Immunol. 2006;50:525–534. doi: 10.1111/j.1348-0421.2006.tb03822.x.
  7. Miki K., Komase K., Mgone C.S., et al. Molecular analysis of measles virus genome derived from SSPE and acute measles patients in Papua, New Guinea. J. Med. Virol. 2002;68:105–112. doi: 10.1002/jmv.10176.
  8. Woelk C.H., Pybus O.G., Jin L., et al. Increased positive selection pressure in persistent (SSPE) versus acute measles virus infections. J. Gen. Virol. 2002;83:1419–1430. doi: 10.1099/0022-1317-83-6-1419.
  9. European Centre for Disease Prevention and Control. Monthly measles and rubella monitoring report, March 2019. Stockholm: ECDC; 2019. URL: https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/monthly-measles-and-ru-bella-monitoring-report-march-2019 (06 February 2020).
  10. Lo NC, Hotez PJ. Public health and economic consequences of vaccine hesitancy for measles in the United States. JAMA Pediatr. 2017;171(9):887– 892. doi: 10.1001/jamapediatrics.2017.1695.
  11. Костинов М.П., Шмитько А.Д., Бочарова И.И., и др. Уровень IgG-антител к вирусу кори в пуповинной крови новорожденных с учетом возраста матерей. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2014;19(3): 30–34.
  12. Костинов М.П., Филатов Н.Н., Журавлев П.И. и др. Возрастные особенности иммунитета к вирусу кори у работников крупного больничного комплекса мегаполиса. Пульмонология. 2018;28(6):701–707.
  13. Костинов М.П., Филатов Н.Н., Журавлев П.И. и др. Уровень коллективного иммунитета к вирусу кори у сотрудников отдельной больницы в рамках государственной программы элиминации кори. Инфекция и иммунитет. 2020;10(1):129–136.
  14. Соловьева И.Л. Костинов М.П., Кусельман А.И. Особенности вакцинации детей с измененным преморбидным фоном против гепатита В, кори, эпидемического паротита. Ульяновск: УлГУ, 2006: 296.
  15. Клинический протокол для Европейского региона ВОЗ. Иммунизация людей, живущих с ВИЧ/СПИДом, и лиц с высоким риском ВИЧ-инфекции. Под ред. Ерамовой И., Матич С., Мюнз М. ВОЗ, 2006:36. URL: https://www.euro.who.int/__data/assets/pdf_file/0005/78503/Chap_12_HIV_rus.pdf?ua=1.
  16. Полищук В.Б., Рыжов А.А., Костинов М.П., и др. Состояние противокоревого иммунитета у пациентов листа ожидания трансплантации легких. ЖМЭИ. 2016; 4: 55–60.
  17. Костинов М.П. Новое в клинике, диагностике и вакцинопрофилактике управляемых инфекций. М.: 1997:110.
  18. Федеральное руководство по использованию лекарственных средств (формулярная система, справочное издание) выпуск XVII. Под ред. А.Г. Чучалина, В.В. Яснецова В.В. М.: ООО Видокс, 2016: 745–768.
  19. Руководство по клинической иммунологии в респираторной медицине (1-е изд.). Под ред. М. П. Костинов, А.Г. Чучалин. М.: ООО АТМО, 2016:128.